GESUNDHEIT VON MENSCH UND TIER

Wildschweine (Sus scrofa scrofa) Morphometrie der Samenkanälchen

Deiler Sampaio CostaI, *; José Frederico Straggiotti SilvaII

ILaboratório de Saúde Animal; [email protected]
IILaboratório von Reprodução Animal, Universidade Estadual do Norte Fluminense; Avenida Alberto Lamego, 2000; 28013-600; Campos dos Goytacazes – RJ – Brasilien

ABSTRACT

Ziel dieser Daten war es, die Morphologie und Funktion des Samenkanälchens bei erwachsenen Wildschweinen zu analysieren. Hoden, die durch einseitige Kastration von fünf Tieren entfernt wurden, wurden verwendet. Das Hodenparenchym bestand zu 82,1±2,2% aus Samenkanälchen und zu 17,9±2,2% aus intertubulärem Gewebe. Der Röhrendurchmesser betrug 249,2 ± 33,0 µm und die Länge der Samenkanälchen pro Gramm Hoden 19,3 ± 4,9 m. Der Effizienzkoeffizient der spermatogonialen Mitosen, der meiotische Index und die Spermatogenese-Effizienz betrugen 10,34, 2,71 bzw. 30,5. Jede Sertoli-Zelle unterstützte etwa 13 Keimzellen. Die untersuchten hystometrischen Parameter waren denen für Hausschweine sehr ähnlich, jedoch, Die Wildschwein-Eigeneffizienz der Spermatogenese und die Sertoli-Zellenindizes waren kleiner als bei Hausschweinen.

Schlüsselwörter: Samenkanälchen, Wildschwein, Sus scrofa scrofa

ZUSAMMENFASSUNG

Objectivou-se com esta pesquisa estudar as características morphometricas e funcionais dos tubulos seminiferos de javalis adultos. Die Hoden von fünf Tieren, die einer einseitigen Orchiektomie unterzogen wurden, wurden verwendet. Das Hodenparenchym bestand zu 82,1 ± 2,2% aus Samenkanälchen und zu 17,9 ± 2,2% aus intertubulärem Gewebe. Der Röhrendurchmesser betrug 249,2 ± 33,0 µm und die Länge der Samenkanälchen pro Gramm Hoden betrug 19,3 ± 4,9 m.Der Effizienzkoeffizient der spermatogonischen Mitosen, die meiotische Ausbeute und die Gesamtausbeute der Spermatogenese betrugen jeweils 10,34, 2,71 und 30,50. Jede Sértoli-Zelle unterstützte etwa 13 Keimzellen. Es wird der Schluss gezogen, dass die in dieser Studie untersuchten histometrischen Parameter den für Hausschweine gemeldeten Werten sehr ähnlich waren, jedoch waren die intrinsische Ausbeute an Spermatogenese und die Indizes der Sertoli-Zellen von Wildschweinen im Vergleich zu diesen Tieren relativ niedrig.

EINLEITUNG

Die Spermatogenese ist ein organisierter und komplexer Prozess, der in den Samenkanälchen geschlechtsreifer Tiere stattfindet. Dies ist in drei verschiedene Phasen unterteilt: proliferative, meiotische und Differenzierungsphase. Obwohl die allgemeine Organisation der Spermatogenese bei allen Säugetieren ähnlich ist, gibt es unter den Arten besondere Merkmale wie Volumenanteil, der von Hodenparenchymkomponenten besetzt ist, Anzahl der Spermatogonien-Generationen, Zellpopulation in Samenkanälchen, tägliche Spermienproduktion, Sertoli-Zellrate und allgemeine Spermatogenese Ausbeute (França und Russell, 1998).Das Wildschwein (Sus scrofa scrofa) ist ein nicht heimisches Schwein, das ursprünglich in Eurasien und einem großen Teil des afrikanischen Kontinents verbreitet war. Es gab auch eine reichliche Population dieser Art auf den kontinentalen Inseln Europas und den Philippinen (Nowak, 1999). Durch menschliches Handeln wurde das Wildschwein aufgrund seiner ernährungsphysiologischen Eigenschaften und seines spürbaren Fleischgeschmacks auf andere Kontinente verbreitet. Sein genauer Eintrittsplatz in Südamerika ist nicht bekannt. Es ist jedoch bekannt, dass sich diese Art gut an die natürlichen Bedingungen Argentiniens angepasst hat und eine große Population bildet. Von diesem ursprünglichen Lebensraum haben sich Wildschweine bis in den Süden Chiles, Brasiliens und auch Uruguays ausgebreitet (Ciluzzo et al., 2001). Diese kommerzielle Schweineproduktion in Brasilien wurde in den 1980er Jahren initiiert, als Bauern im Bundesstaat Rio Grande do Sul Tiere aus Brasilien und Argentinien erwarben, um sie auf dem lokalen Markt zu verkaufen. Mit der großen Akzeptanz Fleisch Von den Verbrauchern intensivierte sich die Produktion und verbreitete sich im ganzen Land (Gimenez, 2001). So wurden in den 1990er Jahren die ersten Farmen im Bundesstaat São Paulo mit Tieren aus dem Bundesstaat Rio Grande do Sul initiiert. Derzeit sind diese Staaten die größten Wildschweinfleischerzeuger des Landes, während die Bundesstaaten Minas Gerais, Paraná, Espírito Santo, Mato Grosso und Mato Grosso do Sul einen noch bescheidenen Beitrag zum Verbrauchermarkt leisten.

Die heimischen Wildschweine haben 2n=38 Chromosomen, unabhängig von Herkunft und Rasse, während die europäischen Wildschweine 2n=36 Chromosomen haben (Darre et al., 1992). Die Tatsache, dass das europäische Wildschwein zu derselben Art gehört wie das heimische Wildschwein, dass diese Unterartkreuzung zu Hybriden mit normaler Fruchtbarkeit für die Art führt (Ciluzzo et al., 2001; Gimenez, 2001) und dass der hybride Phänotyp Fehler bei der Identifizierung reiner Tiere zulässt, haben einige falsch informierte oder skrupellose Landwirte dazu veranlasst, diese Kreuzung zu praktizieren, um die zootechnischen Indizes ihrer Tiere zu verbessern (Gimenez, 2001). Wenn diese Art der Kopplung jedoch auch mit der Absicht durchgeführt wird, die besseren Wachstumsbedingungen der Hausschweine auszunutzen, entstehen Tiere mit Fleisch, das besondere organoleptische Eigenschaften aufweist (Matsuoka et al., 1991).

Obwohl das kommerzielle Potenzial der Wildschweine in den letzten zehn Jahren weitgehend erforscht wurde, sind Forschungen zur Reproduktionsbiologie immer noch rar. Es ist jedoch bekannt, dass die erste Geburt bei Wildschweinen nach 13 Monaten erfolgt, mit einer Variation von 2 bis 9 Säugern pro Jahr (durchschnittlich 4 Schweine) und das Geburtsintervall beträgt ungefähr 7 Monate (Gimenez, 2001). In der gleichen Studie wurde beobachtet, dass die Hausschweine eine größere Reproduktionseffizienz als die Wildschweine haben, die leicht durch kurze Zeit der künstlichen Selektion erklärt werden, aufgrund der jüngsten Implantation dieser Tiere Farmen. In Argentinien ist bekannt, dass die Fortpflanzungssaison der Wildschweine von April bis Mai beginnt und im Oktober endet (Ciluzzo et al., 2001). In brasilianischen Farmen wurde kein saisonaler Effekt auf die Reproduktion dieser Art beobachtet.

Diese Arbeit zielte darauf ab, die morphometrischen und funktionellen Eigenschaften der Samenkanälchen von Wildschweinen zu untersuchen, da die Informationen über die männliche Fortpflanzungsphysiologie bei dieser Art noch knapp waren.

MATERIAL UND METHODEN

Fünf erwachsene europäische Wildschweine (12,6 ±0,9 Monate alt) von einer spezialisierten Farm „Yacan do Alto Agronegócios Ltda“ (Einschlusssystem) wurden in dieser Arbeit verwendet. Die Tiere wurden gewogen, mit 1 sediert.0 ml / 20 kg Azaperon und nach der Perineum- und Hodensackhautantisepsis einer anästhetischen Infiltration in der chirurgischen Inzisionslinie zur einseitigen Kastrationsleistung als Routinetechnik unterzogen. Bald nach der Operation wurde der Hoden von seinem jeweiligen Nebenhoden getrennt, gewogen und die Hodenarterie zur Perfusion mit 0,9% iger Kochsalzlösung mit 5.000 IE Heparin pro Liter Lösung für fünf Minuten bei Raumtemperatur kanuliert. Unmittelbar danach wurden die Hoden erneut mit einer 4%igen Glutaraldehyd-Fixierlösung in Phosphatpuffer 0,05M, pH 7,2 für 20 Minuten perfundiert. Die 1,0 bis 3,0 mm dicken Hodenparenchymproben wurden der Organ Capitata-Extremität, dem mittleren Drittel und der Caudatus-Extremität entnommen. Die Sammlung wurde immer in der Nähe der Tunica albuginea gemacht. Solche Fragmente wurden durch Eintauchen in eine neue 4% ige Glutaraldehydlösung in Phosphatpuffer für mindestens eine Stunde erneut fixiert und später bis zu ihrer histologischen Verarbeitung bei 4ºC gelagert.

Die Proben wurden alle 30 Minuten in Alkohol (70, 80, 90, 95 und 100%) dehydriert. Danach wurden die Fragmente zwei Stunden mit Glykolmethacrylatlösung I (Leica Historesin Embedding Kit – Leica Instruments) infiltriert und anschließend in die Glykolmethacrylatlösung II überführt, wo sie 12 Stunden standen. Als nächstes wurden die testikulären Fragmente in das gleiche Harz mit einem Katalysatorzusatz aufgenommen, wie es der Hersteller empfiehlt. Die Fragmente wurden in einer Flasche mit Kieselgel aufbewahrt, bis sie vollständig trocken waren. Vier Mikrometer Dicke Schnitte wurden mit Glasrasierer im Mikrotom durchgeführt. Die Schnitte wurden mit Toluidinblau-Natriumborat 1% als Routinetechnik angefärbt.

Die histologischen Schnitte wurden in einem mit einer Digitalkamera ausgestatteten Nikon E-600-Mikroskop fotografiert und mit der Software ImageJ 1.33s (Wayne Rasband – National Institute of Health, USA) analysiert. Der mittlere Durchmesser der Samenkanälchen wurde aus dem Durchmesser von 20 Querschnitten in jeder Hodenmessung unabhängig vom Zyklusstadium erhalten. In demselben Abschnitt, in dem der Röhrendurchmesser erhalten wurde, wurde auch die Höhe des Samenepithels gemessen, wobei die Basalmembran bis zur Lumengrenze berücksichtigt wurde. Aus jedem Querschnitt wurden zwei Noten erhalten, wobei als repräsentatives Maß der Mittelwert beider berücksichtigt wurde. Die volumetrische Rate der Hodenparenchymkomponenten wurde unter Verwendung eines 400-Punkte-Gitters geschätzt. In jedem Tier wurden 15 Felder nach dem Zufallsprinzip untersucht. Die Samenkanälchen und das intertubuläre Gewebe wurden berechnet.

Die Samenkanälchen Zellpopulation wurde durch Zählen der spermatogenen Linie verschiedenen Zelltypen Kern geschätzt, wie die Sertoli-Zellen Nucleolus im Stadium 1 des Samenepithel Zyklus, charakterisiert nach dem tubulären Morphologie-System (Berndtson und Desjardins, 1974). Jeder Zelltyp (Sertoli-Zellen, Spermatogonien, Spermatozyten und Spermatiden) wurde in mindestens 10 Tubuli-Querschnitten im Stadium 1 des Zyklus gezählt. Die Zählung wurde für den durchschnittlichen Kerndurchmesser und die Dicke des Schnitts unter Verwendung der von Amann (1962) modifizierten Abercrombie (1946) -Formel korrigiert. Da die Sertoli-Zelle einen unregelmäßigen Kern aufwies, wurde diese Mengenkorrektur aus dem durchschnittlichen Nukleolendurchmesser vorgenommen.

Die Spermatogenese-intrinsische Ausbeute wurde anhand der unter den korrigierten Zellzahlen gefundenen Anteile bestimmt. Folgende Anteile wurden berechnet: Effizienzkoeffizient der spermatogonialen Mitosen (Verhältnis zwischen der Anzahl der primären Spermatozyten in Prä-Leptoten / Leptoten und der Anzahl der Spermatogonien A); meiotischer Index (Verhältnis zwischen der Anzahl der gerundeten Spermatiden und der Anzahl der primären Pachytenen-Spermatozyten); allgemeine Spermatogenese-Effizienz (Verhältnis zwischen den gerundeten Spermatiden und der Anzahl der Spermatogonien vom Typ A); und die während der meiotischen Prophase auftretenden Zellverluste (Verhältnis zwischen der Anzahl der primären Spermatozyten in Prä-Leptoten / Leptoten und die Pachytene primäre Spermatozytenzahl).

Die Sertoli-Zellen unterstützen die Kapazität in Bezug auf die verschiedenen Samenepithel-Zelltypen, wurde aus den folgenden Zellanteilen bewertet: Spermatogonien A / Sertoli-Zellen; primäre Spermatozyten (I) in Prä-Leptoten-Leptoten / Sertoli-Zellen; Spermatozyten I in Pachytenen / Sertoli-Zellen; abgerundete Spermatiden / Sertoli-Zellen; und die gesamten Keimzellen / Sertoli-Zellen. Alle Anteile wurden unter Verwendung der Zellzahlen der Stufe 1 des Zyklus berechnet.

Alle Daten wurden mit der Software „Excel for Windows“ analysiert und die erhaltenen Ergebnisse wurden als Mittelwert ± Standardabweichung nach Sampaio (1998) ausgedrückt.

ERGEBNISSE UND DISKUSSION

Das Körpergewicht der Tiere (Tabelle 1) war etwa 38% kleiner als der Wert von Almeida (2002), der auch mit Wildschweinen in Haftsystemen arbeitete. Diese Unterschiede waren wahrscheinlich auf die Unterschiede im Fütterungsmanagement zwischen den Betrieben und dem Alter in beiden Fällen zurückzuführen. Wildschweine waren im Vergleich zu Schweinen spezialisierter Rassen in ähnlichem Alter erheblich leichter. Allerdings, wenn es nicht spezialisierte Rassen verwendet wurden, wie die afrikanischen Schweine, mit einem Gewicht von rund 34 kg (Okwun et al., 1996) und die Vietnam-Schweine mit einem Durchschnitt von 42 kg (Evans und Ko, 1990) stellten fest, dass die Unterschiede nicht so unterschiedlich waren. Das Hodengewicht bei den Tieren der vorliegenden Arbeit (Tabelle 1) war etwa dreimal kleiner als bei Almeida (2002). Ein Teil dieses Unterschieds schien durch den Unterschied des Körpergewichts zwischen den Tiergruppen erklärt zu werden. Andererseits ist es üblich, dass Unterschiede von bis zu 50% für das Hodengewicht bei Individuen derselben Art in ähnlichem Alter beobachtet werden (Berndtson et al., 1987).

Das von Tunica albuginea und Mediastinum belegte Hodenperzentil betrug etwa 9,5% (Tabelle 1). Subtrahiert man dieses Perzentil vom Hodengewicht, so erhält man ca.18,5g, was dem Hodenparenchymgewicht entsprach. Das Hodengewicht wurde direkt in Volumen umgerechnet, da die Dichte dieses Organs ungefähr 1,04 betrug (Costa et al., 2004). So wurde der testikuläre Parenchym-Mittelwert der Tiere als 18,4 ± 3,7 ml betrachtet (Tabelle 1).

Die Volumendichte des Hodenparenchyms variierte stark zwischen den Arten, aber im Allgemeinen betrug das Perzentil, das von Samenkanälchen besetzt war, bei den meisten Säugetieren etwa 60 bis 90% (Setchell, 1982). Die in diesen Daten gefundenen Werte von 82,1± 2,2% (Tabelle 1) waren denen von Almeida (2002) sehr ähnlich und sie waren ähnlich wie bei Hausschweinen (Okwun et al., 1996, França und Russell, 1998).

Die Rohrdurchmesser-Mittelwerte und die Höhe des Samenepithels sind in Tabelle 1 dargestellt. Der lineare Retraktionsfaktor der Samenkanälchen aufgrund der histologischen Verarbeitung mit Kunststoffharz wurde auf 5% geschätzt (Amann, 1981). Der Röhrendurchmesserwert wurde als typisch für die meisten Amnioten angesehen (180 bis 300 µm) (Roosen-Runge, 1977). Die in diesem Experiment erhaltenen Ergebnisse wurden in diesen Durchschnitt eingefügt (249, 2 ± 33, 0 µm) und lagen sehr nahe an denen für geschlechtsreife Eber (Godinho und Cardoso, 1979, França, 1991). Normalerweise wird der Röhrendurchmesser als spermatogener Aktivitätsindikator bei der Untersuchung der Hodenfunktion verwendet. Der durchschnittliche Röhrendurchmesser der nicht saisonalen Tiere unterliegt nach der Geschlechtsreife keinen signifikanten Veränderungen (França und Russell, 1998). Die Zunahme der Hodengröße nach dieser Zeit ist auf die Zunahme der Tubuluslänge und nicht auf ihren Durchmesser zurückzuführen (Attal und Courot, 1963).

Die Höhe des Samenepithels, die in diesem Experiment für Wildschweine gefunden wurde (67.5µm) wurde in das für Haustiere angegebene Intervall von 60 bis 100µm eingefügt (França und Russell, 1998) und war dem für Wildschweine gemeldeten Intervall sehr ähnlich (Okwun et al., 1996). Dies variierte nicht zwischen dem Samenepithel-Zyklus in verschiedenen Stadien, trotz der unterschiedlichen zellulären Assoziationen in jedem (Wrobel et al., 1995).

Die Gesamtlänge der Samenkanälchen ist ein Parameter, der vom Hodengewicht und dem Volumen der Samenkanälchen abhängt. Somit haben Tiere mit größerem Hodengewicht und volumetrischer Rate der ähnlichen Samenkanälchen einen offensichtlichen Vorteil gegenüber solchen mit kleinerem Hodengewicht. Daher macht der Vergleich zwischen Tieren mit unterschiedlichem Hodengewicht keinen Sinn. Bei der Umrechnung der Samenkanälchengesamtlänge in die Samenkanälchenlänge pro Gramm Hoden werden daher diese Vergleiche möglich. Im Allgemeinen weisen die meisten Säugetiere etwa 10 bis 20 m Samenkanälchen pro Gramm Hoden auf (França und Russell, 1998). So gehört das Wildschwein mit fast 20 Metern zu den Arten mit den größten Werten für diesen Parameter.

Die Zellpopulation der Samenkanälchen von Wildschweinen ist in Tabelle 2 dargestellt. Die Zellmengen wurden korrigiert, weil es eine große Variabilität der Ergebnisse gab, wenn die Zahlen für Vergleiche zwischen verschiedenen Arten und sogar zwischen Individuen derselben Art verwendet wurden (Cardoso, 1981). Diese Variation war hauptsächlich auf Unterschiede in der verwendeten Methodik zurückzuführen, die zu undurchführbaren Vergleichen zwischen verschiedenen Autoren führen konnten. Selbst korrigiert sollten die erzielten Ergebnisse jedoch nur als Tendenzindikator betrachtet werden (França, 1991), da auch andere Faktoren wie unterschiedliche Probenahmen, Alter, Rasse und genetische Selektion das Endergebnis der Zählung beeinträchtigen könnten. Obwohl die Spermatogonia A-Zahl der für Piaus-Eber gemeldeten Zahl ähnlich war (França, 1991), waren die anderen Keimzellen und die Sertoli-Zellpopulation ausnahmslos kleiner als die Werte, die bei den meisten Hausschweinen gefunden wurden (Godinho und Cardoso, 1979, Wettermann und Desjardins, 1979, França, 1991).Die am häufigsten verwendete Form zur Schätzung der spermatogenen Prozesseffizienz bei Säugetieren ist aus numerischen Anteilen unter den Zelltypen für den Querschnitt im Stadium 1 des Zyklus. Somit ist es möglich, vergleichende Studien zwischen Individuen derselben Art und zwischen verschiedenen Arten durchzuführen und nicht nur die Phasen zu lokalisieren, in denen Zellverluste auftreten, sondern sie auch perzentil zu quantifizieren (Russell et al., 1990).

Zu diesem Zweck werden üblicherweise vier Raten verwendet: der spermatogoniale Mitosen-Effizienzkoeffizient, der meiotische Index, die Spermatogenese-Effizienz und die zellulären Verluste, die während der meiotischen Prophase auftreten. Die bei den Tieren der vorliegenden Untersuchung erzielten Ergebnisse sind in Tabelle 3 dargestellt.

Der Effizienzkoeffizient der spermatogonialen Mitosen zeigte an, dass in Stadium 1 jede Spermatogonie A1 für die Bildung von 10,34 Spermatozyten I in Prä-Leptoten / Leptoten verantwortlich war und direkt mit der untersuchten Spezies Spermatogonia generations number assoziiert war. Bei der Analyse der von França und Russell (1998) überprüften Daten wurde festgestellt, dass die meisten der untersuchten Tiere sechs Spermatogonien-differenzierte Generationen (A1-4, In und B oder A1-3, In, B1-2) besaßen, in diesem Fall theoretisch eine Spermatogonie A1 würde 64 Spermatozyten bilden I in Prä-Leptoten / Leptoten, wenn es während dieser Phase keine Zellverluste gäbe. Arten wie Pferde und Kaninchen haben fünf Spermatogonien differenzierte Generationen (A1-3, B1-2 und A1-2, In1-2, B). Daher würden 32 Spermatozyten I in Prä-Leptoten / Leptoten aus einer Spermatogonie A1 gebildet.

Wenn man bedenkt, dass die Anzahl der Spermatozyten I, die theoretisch in Prä-Leptoten / Leptoten bei Wildschweinen erwartet wurden, 64 Zellen betrug, wurde ein ungefährer Verlust von 84% während der spermatogonialen Teilungen dieser Spezies in Betracht gezogen. Etwa 60 bis 80% der Zellverluste in Bezug auf die Spermatozyten, die ich theoretisch in Prä-Leptoten / Leptoten erwarten würde, wurden bei Tieren der meisten Artikel von França und Russell (1998) gefunden.

Ausgehend vom meiotischen Index konnte nachgewiesen werden, dass eine Spermatozyte I in Pachytene 2 erzeugt hatte.71 gerundete Spermatiden, was einem Verlust von 32, 5% entspricht, wenn es mit dem erwarteten theoretischen Anteil (1: 4) verglichen wird, wenn die Spermatogenese-Effizienz 100% beträgt. Ein ähnliches Ergebnis wurde bei erwachsenen Ebern (França, 1991) sowie bei mehreren Arten von Haustieren (França und Russell, 1998) gefunden. Die Spermatozyten-I-Population während der meiotischen Prophase in den Tieren in diesem Experiment blieb konstant, wie für die große Mehrheit der Säugetiere (Berndtson und Desjardins, 1974, Godinho und Cardoso, 1979, Billaspuri und Guraya, 1986).Die Spermatogenese-Effizienz der Wildschweine betrug etwa 12%, d.h. eine Spermatogonie A produzierte nur 30,5 gerundete Spermatiden. Wenn man bedenkt, dass diese Prozessausbeute 100% betrug, würden 256 gerundete Spermatiden produziert. Laut França (1991) zeigten die Hausschweine eine größere intrinsische Effizienz der Spermatogenese (26,6%, als die Wildschweine, 12%). Mehrere Autoren haben Degenerationen und Zellverluste während der spermatogonialen Proliferationsphase und des spermatogenen Prozesses berichtet meiotische Teilungen bei Tieren ohne reproduktive Veränderung (Berndtson und Desjardins, 1974, Billaspuri und Guraya, 1984, Roosen-Runge, 1973). Apoptose spielt eine fundamentale Rolle während der normalen Entwicklung und in mehrzelligen Organismen Homöostase (Jacobson et al., 1997). Im Samenepithel tritt die Apoptose normalerweise spontan oder als Reaktion auf verschiedene Faktoren wie Chemotherapie, hohe Temperaturen, hormonelle Störungen und Wachstumsfaktoren auf (Blanco-Rodríguez und Martínez-Garcia, 1998).

Das Gleichgewicht zwischen Proliferation und Apoptose spielt eine sehr wichtige Rolle bei der Regulation der spermatogenen Zellzahl im Samenepithel. Insbesondere in der spermatogonialen Phase wird der homöostatische Mechanismus der Apoptoseregulation als dichteabhängig angesehen, wodurch die Menge der Keimzellen, die in die meiotische Phase eintreten, auf eine Anzahl begrenzt wird, die durch die verfügbaren Sertoli-Zellen unterstützt werden kann (Huckins, 1978, Sharpe, 1994). Die Sertoli-Zellenindizes sind indikative Parameter für die Kapazität dieser Zellen, Keimzellen im Samenepithel zu unterstützen, dh sie spiegeln die funktionelle Effizienz der Sertoli-Zellen in einer Spezies wider (França und Russell, 1998). Daher haben Arten, bei denen Sertoli-Zellen eine größere Menge keimender Zellen unterstützen, tendenziell eine größere tägliche Samenproduktion als solche, die kleinere Werte für diesen Parameter haben.

In dieser Arbeit wurden 7,27 gerundete Spermatiden für jede Sertoli-Zelle gefunden (Tabelle 3). Dieser Wert war etwa 40% kleiner als der für Piaus-Eber gefundene Wert (12.4 – França, 1991). Dieser Unterschied wurde für die anderen Indizes aufrechterhalten, außer im Fall der Spermatogonie Eine Zahl, die von Sertoli-Zellen unterstützt wurde, die dem von França (1991) gefundenen Wert ähnlich war. Das Ergebnis schien ein Reflex des Auswahlprozesses zu sein, dem die heimischen Wildschweine unterzogen wurden, der wahrscheinlich in effizienteren Sertoli-Zellen gipfelte.

Es wurde der Schluss gezogen, dass die in dieser Arbeit untersuchten histometrischen Parameter den für Hausschweine gemeldeten Werten sehr ähnlich waren, jedoch waren die intrinsische Effizienz der Spermatogenese und die Sertoli-Zellenindizes von Wildschweinen im Vergleich zu diesen Tieren und zu den anderen bereits untersuchten Säugetieren relativ niedrig.Abercrombie, M. (1946), Schätzung von Kernpopulationen aus Mikrotomschnitten. Anat. Rec., 94, 238-248.

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